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微量輔酶ⅠNAD(H)含量測定常見問題
點擊次數:2499 更新時間:2021-06-23

                                                           規格:100管/48樣

輔酶NAD(H)含量測定試劑盒說明書

微量法

正式測定前務必取 2-3個預期差異較大的樣本做預測定

測定意義

輔酶 NAD(H)Ⅰ廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中,NAD+是糖酵解(EMP)和三羧酸循環(TCA)的主要氫受體,生成的 NADH 經呼吸電子鏈(ETC)傳遞把電子交給氧,在合成 ATP 的同時,形成大量的 ROS,同時 NADH 再生為 NAD+。糖、脂、蛋白質三大代謝物質分解中的氧化反應絕大部分通過這一體系完成。NAD(H)含量和 NADH/NAD+比值的高低可用于評價糖酵解和TCA循環的強弱。較高的 NAD(H)NADH/NAD+比值說明細胞呼吸耗氧量較高,處于過氧化狀態。此外,NADH/NAD+比值升高也可抑制糖酵解和TCA循環。另外,NAD+降解產物對細胞信號傳導、代謝和基因表達等具有重要的調控作用。

測定原理

分別用酸性和堿性提取液提取樣品中NAD+NADHNADH通過PMS的遞氫作用,還原氧化型噻唑藍(MTT)為甲瓚,在570nm下檢測吸光值;而NAD+可被乙醇脫氫酶還原為NADH,進一步采用MTT還原法檢測。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計/酶標儀、臺式離心機、移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配制

酸性提取液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存;

堿性提取液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存;

試劑一:液體 10 mL×1 瓶,4℃保存;

試劑二:液體 3 mL×1 瓶,4℃保存;

試劑三:粉劑×1 瓶,-20 ℃保存,用時加入3mL蒸餾水,混勻,用不完的試劑4℃保存一周;

試劑四:粉劑×1 瓶,4 ℃保存,用時加入3mL蒸餾水,混勻,用不完的試劑4℃保存一周;

試劑五:液體 3.6mL×1 瓶,4 ℃保存;

試劑六:液體 30mL×1 瓶,4 ℃保存;

試劑七:液體 50mL×1 瓶,4 ℃保存。

NAD+NADH的提取

1  血清(漿)中 NAD+NADH的提取

NAD+的提取:按照血清(漿)體積(mL):酸性提取液體積(mL)為15~10的比例(建議取約0.1mL血清(漿),加入1mL酸性提取液),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);

冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入500μL堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

NADH 的提取:按照血清(漿)體積(mL):堿性提取液體積(mL)為 15~10 的比例(建

議取約0.1mL 血清(漿),加入 1mL 堿性提取液),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

2  組織中 NAD+NADH 的提取:

NAD+的提取:按照組織質量(g):酸性提取液體積(mL)為15~10的比例(建議取約0.1g組織,加入1mL酸性提取液),冰浴研磨,95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

NADH 的提取:按照組織質量(g):堿性提取液體積(mL)為 15~10 的比例(建議取約 0.1g組織,加入 1mL 堿性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

3  細胞或細菌中NAD+NADH的提取:

NAD+的提取:先收集細胞或細菌到離心管內,棄上清,按照細菌或細胞數量(104個):酸性提取液體積(mL)為500~10001的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL酸性提取液),超聲波破碎 1min(冰浴,強度20%或200W,超聲2s,停1s),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL上清液,加入500μL堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

NADH 的提取:先收集細胞或細菌到離心管內,棄上清,按照細菌或細胞數量(104個):堿性提取液體積(mL)為500~10001的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL堿性提取液),超聲波破碎 1min(冰浴,強度 20%或 200W,超聲2s,停1s),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入500μL 酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

測定步驟:

1、分光光度計或酶標儀預熱30min以上,調節波長至570nm,蒸餾水調零。

2、加樣表(1.5mL 棕色 EP 管中按下表依次加樣):

試劑名稱(μL)

對照管

測定管

樣本

20

20

試劑一

80

80

試劑二

30

30

試劑三

30

30

試劑四

30

30

試劑五

30

30

試劑六

200

混勻,室溫避光靜置 20min

試劑六

 

200

充分混勻,靜置 5min 后,20000g25℃離心 5min,棄上清,沉淀中加入:

試劑七

400

400

混勻,取200μL轉移至微量石英比色皿或96孔板中,570nm下讀取對照吸光值A1和測定管吸光值 A2,計算△A=A2-A1

注意事項

1、如果一次性測定樣本數較多,可將試劑一、二、三和四按比例配成混合液。

2、對照管和測定管的測定步驟的區別:對照管加完試劑一、二、三、四和五后必須馬上加試劑六;測定管加完試劑一、二、三、四和五后必須反應 20min 后再加試劑六。

3、反應過程中注意避光。

4、由于每一個測定管需要設一個對照管,本試劑盒100管保證測48NAD+ NADH.

NAD+NADH含量的計算

a. 用微量石英比色皿測定的計算公式如下

(一)NAD+含量的計算

1、血清(漿)中 NAD+含量計算

NAD+含量(nmol/mL=[(A -0.099)×36.1×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 722×(A -0.099

2、組織、細菌或細胞中 NAD+含量計算

(1)按樣本蛋白濃度計算

NAD+(nmol/mg prot=[(A-0.099)×36.1×V1)]÷(V1×Cpr)

=36.1×(A-0.099)÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算

NAD+(nmol/g 鮮重)= [(A-0.099)×36.1×V1)]÷(W×V1÷V2)

= 72.2×(A -0.099)÷W

(3)按細菌或細胞密度計算

NAD+(nmol/104cell=[(A -0.099)×36.1×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.1444×(A -0.099

(二)NADH 含量的計算

1、血清(漿)中NADH含量計算

NADH 含量(nmol/mL= [(A -0.065)×24.7×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 494×(A -0.065

2、組織、細菌或細胞中 NADH 含量計算

(1)按樣本蛋白濃度計算

NADH (nmol/mg prot= [(A-0.065)×24.7×V1) ]÷(V1×Cpr)

= 24.7×(A -0.065)÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算

NADH (nmol/g 鮮重)= [(A -0.065)×24.7×V1) ]÷(W×V1÷V2)

= 49.4×(A -0.065)÷W

(3)按細菌或細胞密度計算

NADH (nmol/104cell= [(A -0.065)×24.7×V1) ]÷(500×V1÷V2)

=0.0988×(A -0.065

V1:加入反應體系中樣本體積,0.02mLV2:加入提取液體積,2mLV3:加入血清(漿)體積:0.1mLCpr:樣本蛋白質濃度,mg/mLW:樣本質量,g500:細胞或細菌總數,500 萬。

b.96孔板測定的計算公式如下

(一)NAD+含量的計算

1、血清(漿)中 NAD+含量計算

NAD+含量(nmol/mL=[ (A -0.099)×72.2×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 1444×(A -0.099

2、組織、細菌或細胞中 NAD+含量計算

(1)按樣本蛋白濃度計算

NAD+ (nmol/mg prot=[(A-0.099)×72.2×V1)]÷(V1×Cpr)

= 72.2×(A -0.099)÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算

NAD+ (nmol/g 鮮重)= [(A-0.099)×72.2×V1)]÷(W×V1÷V2)

= 144.4×(A -0.099)÷W

(3)按細菌或細胞密度計算

NAD+(nmol/104cell=[(A -0.099)×72.2×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.2888×(A -0.099

(二)NADH 含量的計算

1、血清(漿)中 NADH 含量計算

NADH 含量(nmol/mL= [(A -0.065)×49.4×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 988×(A -0.065

2、組織、細菌或細胞中 NADH 含量計算

(1)按樣本蛋白濃度計算

NADH (nmol/mg prot= [(A-0.065)×49.4×V1) ]÷(V1×Cpr)

= 49.4×(A -0.065)÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算

NADH (nmol/g 鮮重)= [(A -0.065)×49.4×V1) ]÷(W×V1÷V2)

= 98.8×(A -0.065)÷W

(3)按細菌或細胞密度計算

NADH (nmol/104cell= [(A-0.065)×49.4×V1) ]÷(500×V1÷V2)

=0.1976×(A -0.065

V1:加入反應體系中樣本體積,0.02mLV2:加入提取液體積,2mLV3:加入血清(漿)體積:0.1mLCpr:樣本蛋白質濃度,mg/mLW:樣本質量,g500:細胞或細菌總數,500 萬。

注意:最di檢測限為 1nmol/mL 或 或 1nmol/g  鮮重 或 或 0.01nmol/mg prot

實驗代做服務:

 

免疫組化IHC染色實驗服務

細胞、組織TUNEL凋亡染色實驗服務

試劑盒免費代檢測

實驗室代做實驗項目

 

透射電鏡服務實驗服務

石蠟/冰凍切片TUNEL凋亡

核仁組成區嗜銀-AGNOR染色實驗服務

免疫共沉淀(CHIRP)實驗

RNA結合蛋白免疫沉淀(RIP)實驗代做

酶聯免疫(ELISA)技術服務

雞傳染性法氏囊病病毒VP2抗體診斷試劑盒

喹諾酮類快速檢測試劑盒

組織芯片/微陣列定制技術服務

 

染色質免疫沉淀分析(CLIP)實驗服務

 

多因子液相芯片技術(Luminex)實驗

免疫細胞化學ICC實驗服務

ATP/ADP檢測實驗服務

蛋白雙向(2-D)電泳實驗服務

蛋白相互作用分析

堿性磷酸酶染色實驗服務

PKC活性檢測實驗

非標定量實驗

(Label-free)

 

DIGE技術實驗服務

端粒酶活性檢測實驗

細胞生長曲線的測定

掃描電鏡服務

NF-KB p65活性檢測實驗

 

慢病毒包裝實驗服務

 

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