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線粒體復(fù)合體Ⅳ試劑盒說明書
點擊次數(shù):1797 更新時間:2019-04-18

貨號: YJ2273                                                    規(guī)格:25管/24樣

線粒體復(fù)合體Ⅳ試劑盒說明書

可見分光光度法

產(chǎn)品內(nèi)容:

試劑一:25mL×1 瓶,-20℃保存;

試劑二:5mL×1 瓶,-20℃保存;

試劑三:0.5 mL×1 瓶,-20℃保存;

試劑四:液體10mL×2 瓶,4℃保存;

試劑五:粉劑×2 支,-20℃保存;

試劑六:粉劑×2 支,-20℃保存;

產(chǎn)品說明

    線粒體復(fù)合體Ⅳ又稱細胞色素C 氧化酶,也是線粒體呼吸電子傳遞鏈主路和支路的共有成分,負責催化還原型細胞色素C 的氧化,并終把電子傳遞給氧,生成水。還原型細胞色素C 550nm 有特征光吸收,線粒體復(fù)合體Ⅳ催化還原型細胞色素C 生成氧化型細胞色素C,因此550nm 光吸收下降速率能夠反映線粒體復(fù)合體Ⅳ酶活性。

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

操作步驟:

正式實驗前務(wù)必取2-3個預(yù)期差異較大的樣本做與測定。

一、樣本的前處理:

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離:

  1. 準確稱取0.1g 組織或收集500萬細菌或細胞,加入1mL試劑一和10uL試劑三,用冰浴勻漿器或研缽勻漿。
  2. 將勻漿600g4℃離心5min
  3. 棄沉淀,將上清液移至另一離心管中,11100g4℃離心10min
  4. 上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白,可用于測定從線粒體泄漏的復(fù)合體Ⅳ(此步可選做)。
  5. 步驟④中的沉淀即為線粒體,加入200uL試劑二和2uL試劑三,超聲波破碎(冰浴,功率20%或200W,超聲3s,間隔10秒,重復(fù)30次),用于復(fù)合體Ⅳ酶活性測定。

二、測定步驟:

  1. 分光光度計預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至550nm,蒸餾水調(diào)零。
  2. 樣本測定
  1. 工作液的配制:臨用前取試劑四、試劑五、試劑六各一支,將試劑五和試劑六依次轉(zhuǎn)移到試劑四中混合溶解。分批配制工作液是為了防止當天不能測完,導(dǎo)致工作液失效。
  2. 將工作液置于37℃(哺乳動物)或25℃(其它物種)孵育5min;用不完的試劑4℃可保存一周;
  3. 1mL 玻璃比色皿中加入40μL 樣本和800μL 工作液,立即混勻,記錄550nm 處初始吸光值A1  1min 后的吸光值A2,計算ΔA=A1-A2

注意:若ΔA 大于0.2,需將樣本用試劑二稀釋適當倍數(shù)(計算公式中乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù)),使A1-A2 小于0.2,可提高檢測靈敏度。

三、復(fù)合體Ⅳ活力單位的計算:

  1. 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義:每mg 組織蛋白每分鐘催化降解1 nmol 還原型細胞色素C 定義為一個酶活力單位。

復(fù)合體Ⅳ活力(U/mg prot)=[ΔA×V 反總÷ε×d×109]÷(V ×Cpr) ÷T=1099×ΔA÷Cpr

此法需要自行測定樣本蛋白質(zhì)濃度。

  1. 按樣本鮮重計算

單位的定義:每g 組織每分鐘催化降解1nmol 還原型細胞色素C 定義為一個酶活力單位。

復(fù)合體Ⅳ活力(U/g 鮮重)=[ΔA×V 反總÷ε×d×109]÷(W× V ÷V 樣總)÷T=222×ΔA÷W

  1. 按細菌或細胞密度計算

單位的定義:每1 萬個細菌或細胞每分鐘催化降解1nmol 還原型細胞色素C 定義為一個酶活力單位。

復(fù)合體Ⅳ活力(U/104 cell)=[ΔA×V 反總÷ε×d×109]÷(500×V ÷V 樣總)÷T=0.444×ΔA

    V 反總:反應(yīng)體系總體積,8.4×10-4 Lε:細胞色素C 摩爾消光系數(shù),1.91×104 L / mol /cmd:比色皿光徑,1cmV 樣:加入樣本體積,0.04 mLV 樣總:加入提取液體積,0.202 mLT:反應(yīng)時間,1 minCpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mLW:樣本質(zhì)量,g500:細胞或細菌總數(shù),500 萬。

 

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